UV1901PC紫外可見分光光度計測二羥基丙酮含量

二羥基丙酮(1,3-dihydroxyaceton，簡稱DHA，1)是一種天然存在的酮糖，具有生物可降解性，對人體和環(huán)境無毒害，可食用。1是一種重要的醫(yī)藥中間體，也可作為一種抗病毒試劑 [1]。1能與皮膚zui上層物質（如角質層內的氨基酸）發(fā)生Maillard反應使皮膚達到棕色到深色的染色效果。根據(jù)這一原理1在臨床上被廣泛應用于治療白癲風[2]，它也被用來做為混合型卟啉病的保護劑[3]。還有研究表明在紫外照射下1能延緩皮膚癌變[4]。

1的生產方法主要有微生物發(fā)酵法和化學合成法，國外比較成熟的工業(yè)生產主要是用含有甘油脫氫酶的微生物以甘油底物發(fā)酵生產。目前，發(fā)酵液中1檢測方法有氣相色譜法[5]、液相色譜法[6]、薄層層析法[7]。氣相色譜法測定時1不能直接汽化，需要進行衍生化，操作繁瑣；液相也比較耗時。薄層層析法只能定性分析，無法定量。在酸性溶液中1的酮基與二苯胺（diphenylamine，2）的氨基發(fā)生反應生成藍色復合物，在608 nm處吸光度與1的濃度呈線性關系，在酸性條件下，2不與甘油發(fā)生反應。

圖1 2分光光度法反應原理

1  儀器與試劑

UV1901PC型紫外可見光分光光度計（上海奧析科學儀器有限公司）

1（Bio Basic公司）；2（上海試劑三廠）；無水乙酸；濃硫酸；甘油；酵母粉；磷酸二氫鉀。

菌種：葡糖桿菌Gluconobacter sp. HD 410，由河南大學生物工程研究所篩選并保藏。發(fā)酵培養(yǎng)基成分：甘油10%，酵母粉1.5%，無水KH2PO4­ 0.5%，pH自然。

2  方法與結果

2.1 溶液配制

1溶液：準確稱取1 1 g，于1000 ml容量瓶中定容，制成1 g/l 母液，分別加蒸餾水配制成0、0.1、0.15、0.2、0.25、0.3、0.35、0.4、0.45、0.5 g/l的1梯度溶液。

2溶液：準確稱取2 0.6 g，量取無水乙酸54 ml邊攪拌邊加入濃硫酸 6 ml，混勻后加入稱取的2，至*溶解后密封保存。

2.2  2分光光度法測定1

標準曲線繪制：分別取0.5 ml 1梯度溶液，4.5 ml 2溶液，于比色管中沸水浴14 min，流水冷卻。以不含1的溶液為空白參比，UV1901PC紫外可見分光光度計608 nm處測樣品的吸光值。每個樣品三次重復，取平均值。

2.3發(fā)酵液1含量測定：取對數(shù)期種子液，按5%的接種量接入搖瓶。200 r/min，28°C發(fā)酵3~4 d，取發(fā)酵液1.5 ml，8000 g離心10 min。取上清液0.5 ml用蒸餾水稀釋100倍，取0.5 ml稀釋液加入4.5 ml 2溶液，沸水浴14 min，流水冷卻。以未接種發(fā)酵液為空白，在608 nm處測吸光值，根據(jù)標準曲線計算發(fā)酵液中1含量。

2.4 甘油濃度測定

用高碘酸氧化法[8]測發(fā)酵液中甘油的含量。

2.5 測定條件研究

2.5.1 測定波長的選擇

按2.2方法以蒸餾水為空白參比掃描不同1濃度400～700 nm的吸收光譜。每個樣品三次重復。

是保持同樣的的2溶液濃度，僅改變1濃度得到的一系列吸收光譜。從圖2中可以看出，在608 nm波長處顯色反應有zui大吸收值，且吸光度的增加與1溶液濃度的增加成正比。盡管在405 nm波長處顯色反應也有吸收峰，但峰值較低，因而本法zui終選擇測定波長為608 nm (OD608)。

圖2不同1濃度吸收光譜

2.5.2 顯色劑用量的選擇

取0.2 g/l 1溶液0.5 ml，分別加入含不同濃度的2溶液，顯色反應后流水冷卻，測定吸光度OD608。由圖3A得出結論，2含量高于1%（w/v）時吸光值不再增加，用量過少導致1與其不能充分反應，所測結果比實際偏低，故本法zui終選擇的顯色劑用量為1%（w/v）

 A不同濃度2對吸光值的影響；  B不同濃度濃硫酸含量對吸光值的影響；

C不同溫度對吸光度的影響；    D反應時間對吸光值的影響

2.5.3 硫酸用量的確定

在酸性條件下1才能與2結合，生成藍色的復合物。由圖3B得出結論，濃硫酸含量為10%時生成的藍色復合物吸光值達到zui大。濃硫酸加入量不足或過多均導致吸光值偏低，且硫酸加入量過多會使反應冷卻后吸光值不穩(wěn)定。

2.5.4 加熱溫度的選擇

常溫下2與1反應很慢，3C表明，在沸水浴條件下，生成的復合物吸光值zui大，用冷水冷卻后吸光值穩(wěn)定。

2.5.5 加熱時間的選擇

沸水浴條件下反應需一定的時間1才能與2充分反應，3D表明，沸水浴14 min后，吸光值zui大，且吸光值穩(wěn)定，有利于準確測定；隨著加熱時間的增加，吸光值略有降低，冷卻后吸光值不穩(wěn)定。因而，本法選用的沸水浴時間為14 min。

2.6  測定方法的影響因素

2.6.1   顯色穩(wěn)定時間的選擇

取不同濃度1溶液與顯色劑反應后，在不同時間測定吸光值，試樣溶液在顯色完成至12 h內吸光值穩(wěn)定，表明本方法顯色穩(wěn)定性良好。

2.6.2 相關影響因素研究

取發(fā)酵72 h的發(fā)酵液與未接種的培養(yǎng)基，8000 g離心10 min。取0.5 ml未接種培養(yǎng)基，以水為空白對照測吸光值，培養(yǎng)基在OD608值為0。結果說明甘油和培養(yǎng)基中的雜質對該測定方法沒有影響。

量取1 ml離心上清液，加入4 ml無水乙醇[9]，搖勻，離心后吸上清加蒸餾水稀釋100倍，測其吸光值。與未加乙醇沉淀蛋白質的發(fā)酵液相比，二者吸光值沒有顯著的差別。結果表明菌體自溶產生的可溶性蛋白對該檢測方法影響不大。

2.7  線性范圍及檢測限

按“2.2”項下方法分別配制不同濃度的1溶液進行標準曲線繪制，結果表明1的濃度在0.5 g/l以內時，吸光度（A）與質量濃度（c）呈線性關系。1濃度為0.1～0.4 g/l時，0.2≤ OD608 ≤0.8，回歸方程為A=0.00855+1.9095c (r2=0.999)，線性良好。

2.8 精密度、回收率及準確度實驗

取發(fā)酵液待測樣品，按照10 g/l和15 g/l的量精密加入1，按“2.2”項下方法反應后測定1的含量（重復測定五次），結果見表1所示，本方法的平均回收率和RSD均在正常誤差范圍之內。

表1   精密度和回收率測定（n=5）

此外，對樣品還進行了分光光度法和HPLC法測定的對比實驗，以測定該法的準確度。將含有不同濃度1（10~100 g/l）的發(fā)酵液稀釋后分別按照“2.2”和“2.3”項中方法分別進行測定。實驗結果表明，兩種方法的測量誤差在2%以內，進一步證明本測定方法不受發(fā)酵液中甘油雜質的影響，具有相對較高的準確度。

2.9  發(fā)酵液中1濃度變化曲線的測定

按照“2.2”項中的方法，測定發(fā)酵液中1濃度變化曲線，并同時測定甘油的濃度變化（方法見“2.4”項），結果如圖4。從圖中可以看出，隨著發(fā)酵時間延長，底物甘油呈下降趨勢，在微生物分泌的酶作用下被轉化成產物1，108 h時1產量達到64.5 g/l，轉化率達到79.6%（1/甘油，w/w）。

  甘油轉化生成1曲線

3. 討論

本文建立了用2分光光度法測定甘油為底物的發(fā)酵液中1含量的方法。測定*波長選為608 nm，2*濃度為1%（w/v）；沸水浴加熱時間14 min。該方法測定過程不受發(fā)酵液中甘油和可溶性蛋白影響，具有顯色穩(wěn)定、測量快速準確的優(yōu)點，非常適合于微生物發(fā)酵法生產1工藝中的產物測定。

結論：甘油為底物發(fā)酵液中二羥基丙酮的分光光度檢測方法?？疾祜@色劑的用量、反應溫度、反應時間、顯色穩(wěn)定時間、發(fā)酵液成分和發(fā)酵液中菌體自溶物等對測定的影響。該方法的相關系數(shù)R2=0.999，檢測范圍0.1～0.4 g/l，樣品回收率達102.4%，測定結果不受發(fā)酵液中甘油及其它雜質影響，具有快速準確的優(yōu)點。